2015 год № 4
Теоретическая и экспериментальная медицинаУДК 616-053.1:612.82-02:616-001.8:612.015.1:599.323-092.9
А.А. Симанкова1, О.А. Лебедько1,2, Е.Н. Сазонова1,2
Влияние регуляторных пептидов семейства опиоидов на ранние постнатальные церебральные последствия антенатальной гипоксии
1Дальневосточный государственный медицинский университет,680000, ул. Муравьева-Амурского, 35, тел. 8-(4212)-76-13-96, e-mail: nauka@mail.fesmu.ru;
2Институт охраны материнства и детства Хабаровского филиала Дальневосточного научного центра физиологии и патологии дыхания СО РАМН, 680022, ул. Воронежская, 49, корп. 1, тел./факс: 8-(4212)-35-63-35, 35-65-91, e-mail: iomid@yandex.ru, г. Хабаровск Контактная информация:
А.А. Симанкова, e-mail: annasimmankova@mail.ru
Резюме:
Исследовали возможность коррекции церебральных последствий антенатальный гипоксии у 7-суточных белых крыс с помощью опиоидного пептида даларгина (Tyr-D-Ala-Gly-Phe-Leu-Arg) и неопиатного аналога лей-энкефалина (Phe-D-Ala-Gly-Phe-Leu-Arg) НАЛЭ. Антенатальная гипоксия индуцирует снижение массы тела и абсолютной массы мозга 7-суточных белых крыс, достоверно угнетает ДНК-синтетическую активность клеток неокортекса и поля СА1 гиппокампа собственно теменной доли, вызывает снижение анаболической активности клеток головного мозга, а также активирует процессы свободнорадикального окисления в гомогенатах мозга животных. 7-суточные животные, получавшие даларгин на фоне перенесенной антенатальной гипоксии, имеют достоверно меньшие массу тела и абсолютную массу мозга, также у них зарегистрировано снижение анаболической активности клеток головного мозга по отношению к контрольным параметрам. Вместе с тем, отмечается нормализация ДНК-синтетической активности клеток неокортекса, стимуляция синтеза ДНК клетками гиппокампа, уменьшение выраженности оксидативного стресса на органном уровне. 7-суточные животные, получавшие неопиатный аналог лей-энкефалина, после перенесенной антенатальный гипоксии демонстрировали результаты аналогичные таковым в группе "Антенатальная гипоксия+даларгин". Сходство эффектов данных пептидов свидетельствует в пользу неопиатного механизма нейротропных эффектов исследуемых пептидов.
Ключевые слова:головной мозг, антенатальная гипоксия, опиодные пептиды
А.А. Simankova1, О.А. Lebed'kо1,2, Е.N. Sazonovа1,2
Effect of regulatory opioid peptides on early postnatal cerebral consequences of antenatal hypoxia
1Far Eastern State Medical University, Khabarovsk;
2Research Institute Of Maternity And Infancy Protection, Khabarovsk Summary:
The authors studied a potential correction of cerebral complications after antenatal hypoxia in 7 day old albino rats using opioid peptide dalargin (Tyr-D-Ala-Gly-Phe-Leu-Arg) and non-opiate analogue leu-enkephaline (Phe-D-Ala-Gly-Phe-Leu-Arg). Antenatal hypoxia induced body mass and absolute brain mass decrease in 7 day old albino rats, reliably suppresses DNA-synthetic activity of cells in neocortex and fields СА1 of hippocampus, especially its parietal lobe, causes decrease of anabolic activity of the brain cells, activating process of free radicals oxidation in animals' brain homogenates. 7 day old albino rats, receiving dalargin at the background of previous antenatal hypoxia, have a reliably less body and absolute brain mass. Brain cells' anabolic activity had a marked decrease compared to control parameters. At the same time, the authors noticed normalization of DNA-synthetic activity in cells of neocortex, DNA synthesis stimulation by hippocampus cells, diminishing expression of oxidative stress at organs' level. 7-day old animals receiving non-opiate analogue leu-enkephaline after antenatal hypoxia, demonstrated the findings similar to the ones received in the group "antenatal hypoxia+dalargin". The similarity of both peptides effect gives evidence in favor of non-opiate mechanism of neurotropic effects of the studied peptides.
Key words:brain, antenatal hypoxia, opioid peptides
Антенатальная гипоксия оказывает долговременное отрицательное действие на центральную нервную систему, приводя к множественным нарушениям, связанным с гиперпродукцией активных форм кислорода (АФК) [2, 9, 14]. До 72 % новорожденных, перенесших гипоксию в антенатальном периоде, имеют психоневрологический дефицит различной степени тяжести; у 25 % формируются устойчивые расстройства в виде задержки умственного и двигательного развития, детского церебрального паралича, эпилепсии и др. [1, 8]. Несмотря на многочисленность клинических и экспериментальных исследований, посвященных механизмам антенатального гипоксического повреждения головного мозга, способы коррекции возникающих нарушений остаются недостаточно изученными [7]. Одной из наиболее перспективных групп биологически активных веществ для коррекции гипоксических повреждений мозга считают регуляторные пептиды группы опиоидов. Известно, что опиоидная система может обеспечить защиту от дегенеративных неврологических заболеваний, характеризующихся состоянием кислородной недостаточности [13]. Выявлена важная роль активации δ -опиоидных рецепторов в нейропротекции при ишемии мозга [6, 10]. Вместе с тем, возможность использования регуляторных пептидов группы опиоидов для коррекции церебральных последствий антенатальной гипоксии в настоящее время исследована недостаточно. Целью настоящего исследования была оценка возможности коррекции ранних церебральных последствий антенатальной гипоксии регуляторными пептидами семейства опиоидов.
При постановке опытов руководствовались приказом МЗ РФ № 267 от 19.06.2003. В экспериментах использовали потомство белых крыс линии Вистар. Исследовали пептиды 1. Пептид даларгин (Tyr - D-Ala - Gly - Phe - Leu - Arg) - энзимоустойчивый синтетический аналог эндогенного лей-энкефалина, δ -/μ-агонист опиоидных рецепторов периферического действия [3]. 2. Пептид НАЛЭ (Phe - D-Ala - Gly - Phe - Leu - Arg) - аналог лей-энкефалина, не имеющий аффинности к опиатным рецепторам из-за замены в молекуле концевой аминокислоты Tyr на аминокислоту Phe. Пептиды были синтезированы для исследования научно-производственным объединением ООО "Алмабион" (Россия), чистота пептидов составляла 98,6-98,8 %. Моделирование антенатальной гипоксии проводили в барокамере, куда помещали 3-месячных крыс-самок с 15-х по 19-е сутки гестации и "поднимали" на высоту 9 000 м над уровнем моря, что соответствует парциальному давлению кислорода 42 мм рт. ст. Формировали 4 экспериментальные группы: 1-я группа - "Контроль" - потомство интактных животных, получавшее со 2-х по 6-е сутки жизни внутрибрюшинное введение 0,1 мл изотонического раствора хлорида натрия; 2-я группа - "Антенатальная гипоксия" - потомство самок белых крыс, подвергнутое антенатальной гипоксии и получавшее со 2-х по 6-е сутки жизни внутрибрюшинно 0,1 мл физиологического раствора хлорида натрия; 3-я группа - "Антенатальная гипоксия+даларгин"- потомство самок белых крыс, подвергнутое антенатальной гипоксии и получавшее со 2-х по 6-е сутки жизни внутрибрюшинно даларгин в дозе 100 мкг/кг в 0,1 мл изотонического раствора хлорида натрия; 4-я группа - "Антенатальная гипоксия+НАЛЭ" - потомство самок белых крыс, подвергнутое антенатальной гипоксии и получавшее со 2-х по 6-е сутки жизни внутрибрюшинно пептид НАЛЭ в дозе 100 мкг/кг в 0,1 мл изотонического раствора хлорида натрия. Потомство выводили из эксперимента в возрасте 7 суток. У 7-суточных животных проводили оценку гравиметрических параметров: оценивали массу тела, абсолютную и относительную массу полушарий головного мозга. ДНК-синтетические процессы в неокортексе и гиппокампе головного мозга анализировали с помощью авторадиографии с 3Н-тимидином, для чего за 1 час до эвтаназии вводили Н3-тимидин в дозе 1 мкКюри на грамм веса (уд. активность 84 Кюри/моль). Подсчет количества меченых ядер (ИМЯ, %) осуществляли в клетках неокортекса и поля СА1 гиппокампа собственно теменной доли полушарий головного мозга. Также на гистологических срезах полушарий мозга, окрашенных азотнокислым серебром по методу AgNORs, производили подсчет количества ядрышек в ядрах клеток II и V слоев неокортекса и поля СА1 гиппокампа собственно теменной доли, анализ средней площади сечения ядер и среднюю суммарную площадь сечения ядрышек в ядрах клеток названных областей, для чего проводили морфометрическую обработку материала на установке "МЕКОС-Ц". Для интегральной оценки процессов свободнорадикального окисления использовали метод хемилюминесценции (ХМЛ). Регистрацию ХМЛ осуществляли по методикам, описанным ранее [5]. Определяли: S-sp - интенсивность генерации свободных радикалов; h-содержание гидроперекисей липидов; Sind-1 - скорость образования и накопления перекисных радикалов; H и Sind-2 - показатели, величины которых обратно коррелируют с перекисной резистентностью и активностью антиоксидантной антирадикальной защиты, соответственно. Всего в исследовании было использовано 146 животных. Обработку результатов экспериментов проводили с помощью стандартной программы Statistica-5.0. Различия между группами оценивали по t-критерию Стьюдента и считали достоверными при p<0,05.
Масса тела и абсолютная масса мозга 7-суточных животных во всех экспериментальных группах, перенесших антенатальную гипоксию, были достоверное ниже контрольных параметров (таблица 1). Показатель относительной массы мозга у животных, перенесших антенатальную гипоксию, изменялся разнонаправленно: был достоверно выше контрольного параметра в группе "Антенатальная гипоксия", достоверно снижался в группе "Антенатальная гипоксия+даларгин" и не отличался от контрольного параметра в группе "Антенатальная гипоксия + НАЛЭ" (табл. 1).
Примечание. * - р<0,05 по отношению к группе "Контроль". Антенатальная гипоксия вызывала существенное снижение ДНК-синтетической активности клеток неокортекса и гиппокампа на 52 % и 46,6 %, соответственно (табл. 2). У животных, подвергнутых воздействию антенатальной гипоксии и неонатальному введению регуляторных пептидов, мы выявили достоверное увеличение ДНК-синтетической активности клеток гиппокампа: для пептида НАЛЭ это увеличение составило 171,2 %; для даларгина - 191,8 %. ДНК-синтетическая активность клеток неокортекса у животных, подвергнутых воздействию антенатальной гипоксии и неонатальному введению пептидов, не имела достоверных отличий от контрольного показателя.
Примечание. * - р<0,05 по отношению к группе "Контроль". Антенатальная гипоксия индуцировала достоверное снижение количества ядрышек в ядрах клеток II слоя неокортекса собственно теменной доли (табл. 3). Известно, что нейроны головного мозга реагируют снижением активности ядрышкового аппарата в ответ на оксидативный стресс [11].
Примечание. * - р<0,05 по отношению к группе "Контроль". Неонатальное введение пептидов на фоне последствий антенатальной гипоксии достоверно уменьшало количество ядрышек в ядрах клеток всех исследованных зон головного мозга (табл. 3). Причины выраженного угнетающего влияния введения исследуемых пептидов на ядрышковый аппарат клеток головного мозга не связаны с потенцированием оксидативного стресса. Хемилюминесцентное исследование гомогенатов мозга у животных, подвергнутых введению пептидов после антенатального гипоксического воздействия, зарегистрировало достоверное уменьшение выраженности оксидативного стресса на тканевом уровне, по сравнению с животными, не получавшими пептидной коррекции (табл. 4).
Примечание. * - отличия достоверны по отношению к группе "Контроль"; # - отличия достоверны по отношению к группе "Антенатальная гипоксия". Количество ядрышек в ядрах зрелых нейронов имеет прямую корреляционную связь с синаптической активностью клеток [12]. Возможно, уменьшение количества ядрышек в нейронах после неонатального введения пептидов обусловлено снижением синаптической активности нейронов, что может носить компенсаторный защитный характер в условиях оксидативного стресса. Кроме того, показано, что репрессия ядрышкового аппарата в незрелых нейронах может быть необходимым элементом их дифференцировки [11]. Физиологическое значение полученных экспериментальных данных требует дальнейшего исследования. Вместе с тем, следует отметить, что в ранее проведенных исследованиях на большой группе животных [4] было выявлено достоверное и существенное снижение смертности в группе белых крыс, подвергнутых неонатальному введению пептида НАЛЭ после антенатальной гипоксии.
|
||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Адрес: 680000, г. Хабаровск, ул. Муравьева-Амурского, д.35
Телефон: (4212) 76-13-96
© 2010 ДМЖ Электронная версия журнала (ППИ)
«Дальневосточный медицинский журнал» |